GB/T 25172-2020 猪常温精液生产与保存技术规范
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资料介绍
ICS 65 . 020 . 30 B 43
中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准
GB/T 25172—2020
代替 GB/T 25172—2010
猪常温精液生产与保存技术规范
Technicalspecificationforproductionandpreservationoffreshboarsemen
2020-1 1-19 发布 2021-06-01 实施
国家市场监督管理总局国家标准化管理委员会
发
布
GB/T 25172—2020
前 言
本标准按照 GB/T 1 . 1—2009 给出的规则起草。
本标准代替 GB/T 25172—2010《猪常温精液生产与保存技术规范》,与 GB/T 25172—2010 相比主要变化如下:
— 增加了“GB 23238”和“GB/T 6682”(见第 2 章);
— 增加了“宜用设备采精法,按使用说明书操作”(见 5 . 1 . 2 . 3) ;
— 将精子畸形率由“≤ 18%”修改为“≤20%”(见 5.2.2 , 2010 年版的 5.2) ;
— 删除了“细菌菌落数”(见 5 . 2 , 2010 年版的 5 . 2) ;
— 精子活力证实方法增加了“使用自动分析仪器应按其检测方法操作”(见 5 . 2 . 3 . 2) ;
— 将稀释液 pH 值“6.4~7.2”修改为“6.8~7.2”(见 4.5.4 , 2010 年版的 6.1.3) ;
— 将稀释后精液“每头份剂量”“总精子数”修改为“剂量、每剂量中直线前进运动精子数应符合GB 23238 的规定。”(见 5 . 4 . 1 , 2010 年版的 6 . 2 . 5) ;
— 将“精液产品质量(见表 2)”修改为“常温精液产品质量和标志应符合 GB 23238 的规定。”(见5 . 6 . 4 , 2010 年版的 8 . 4) 。
本标准由中华人民共和国农业农村部提出。
本标准由全国畜牧业标准化技术委员会(SAC/TC 274)归口 。
本标准起草单位:青岛市畜牧兽医研究所、华南农业大学、北京养猪育种中心、黄岛区家畜改良站。本标准主要起草人:戈新、张守全、王建华、周海深、张宝珣、李培培、刘玉华、程明、孟庆利。
GB/T 25172—2020
猪常温精液生产与保存技术规范
1 范围
本标准规定了猪常温精液生产与保存的基本要求和技术要求,描述了对应的试验方法,给出了保存和运输的内容。
本标准适用于猪的常温精液生产与保存。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。 凡是注 日期的引用文件,仅注 日期的版本适用于本文件 。凡是不注 日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
GB 23238 种猪常温精液
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
原精液 rawsemen
采集后未经稀释的精液。
3.2
常温精液 freshsemen
经稀释后在 16 ℃ ~18 ℃下保存,仍具有受精能力的精液。
注:改写 GB 23238—2009,定义 3 . 2 。
3.3
精子活力 sperm motility
在 37 ℃下呈直线前进运动的精子占总精子数的百分率。
3.4
精子密度 sperm concentration
单位体积精液中的精子数。
3.5
精子畸形率 abnormalsperm percentage
畸形精子占总精子数的百分率。
4 基本要求
4 . 1 种公猪
应健康且达到种用要求。 成年公猪宜每周采精二次至三次,青年公猪宜每周一次至二次。
GB/T 25172—2020
4 . 2 采精员
应经过专业培训,工作时应着洁净工作衣、帽,穿长胶鞋,戴无毒塑料手套。
4 . 3 采精室
应设置采精区和安全区。 采精区设置假台猪,地面防滑,并保持清洁、安静和避光。
4 . 4 精液处理室
应设置精液检查、稀释和分装区,温度宜控制在 22 ℃ ~25 ℃ ,避免太阳光直射或紫外灯照射。配
备仪器和用品参见附录 A。
4 . 5 稀释液
4 . 5 . 1 配制用水应符合 GB/T 6682 中二级水或三级水的要求。
4 . 5 . 2 商品稀释剂按说明书使用。 不得使用过期或变质稀释剂。
4 . 5 . 3 自配稀释液所用试剂应为分析纯,稀释液配方参见附录 B。
4.5.4 稀释液 pH 值应为 6.8~7.2。
4.5.5 使用前 1 h 配制,配制后应及时贴上标签,标明品名、配制 日期和时间、经手人。
4.5.6 稀释液应密封后置于冰箱中 0 ℃ ~4 ℃冷藏,保存时间不应超过 24 h。
5 技术要求
5 . 1 精液采集
5 . 1 . 1 采精前准备
5 . 1 . 1 . 1 集精杯或保温杯(内置无毒塑料袋并覆盖四层纱布或一层精液过滤纸)、载玻片、盖玻片、精液
处理器皿应预热至 37 ℃。
5. 1 . 1 .2 显微镜载物台恒温板应预热至 37 ℃。精子密度仪使用前应预热。
5 . 1 . 2 采精
5 . 1 . 2 . 1 应剪去公猪包皮部长毛,清洁体表,擦干水渍。
5. 1 .2.2 应挤净包皮积液,先用 0.1%高锰酸钾溶液清洗腹部和包皮,再用温水清洗后擦干。
5 . 1 . 2 . 3 宜用设备采精法,按使用说明书操作。 手握法采精时,应一只手戴双层无毒聚乙烯手套,按摩公猪包皮部,待公猪爬跨假台猪并伸出阴茎,脱去外层手套,握紧龟头,使其不能旋转,顺势将阴茎的“S”状弯曲延直。 另一只手持集精杯或保温杯,弃去最初射出的少量精液,收集精液至射精完毕。
5 . 1 . 2 . 4 采精完毕后,应标记公猪耳号,送至精液处理室。
5 . 2 精液检验
5 . 2 . 1 检验项目
外观、气味、采精量、精子活力、精子密度和精子畸形率。
5 . 2 . 2 原精液质量
应符合表 1 的规定,其中任何一项不符合要求的则废弃。
GB/T 25172—2020
表 1 原精液质量
5 . 2 . 3 证实方法
5 . 2 . 3 . 1 采精量
采用称量法计算采精量,1 g 相当于 1 mL。
5 . 2 . 3 . 2 精子活力
取中层精液 10 μL~15 μL,在 200 倍~400 倍显微镜下检查。每份精液取样二次,每个样观察三个
视野,计算平均值。 使用自动分析仪器应按其检测方法操作。
5 . 2 . 3 . 3 精子密度
采用精子密度仪测定。 应定期用血细胞计数板法校正。
5 . 2 . 3 . 4 精子畸形率
采用伊红或姬姆萨染色法检查时,在 200 倍~400 倍显微镜下观察左、中、右三个视野中不少于 200
个精子。 也可采用相差显微镜直接观察。 每二个月抽检一次。
5 . 3 精液稀释
5 .3 . 1 精液采集后应尽快稀释,放置时间不宜超过 15 min。
5.3.2 采用等温稀释。精液与稀释液温差不得超过 1 ℃ ,根据精液温度调节稀释液温度,不得反向操作。
5 . 3 . 3 将稀释液沿杯壁缓慢加入精液中,轻轻摇动或沿一个方向搅拌,混合均匀。 高倍稀释时,先低倍稀释(1 ∶ 1) ~(1 ∶ 2) , 30 s 后再加入余下的稀释液。
5.3.4 稀释液总量以体积V计,数值以毫升(mL)表示,按式(1)计算:
V v2 -v1 ……………………( 1 )
式中:
v1 — 采精量,单位为毫升(mL) ;
c — 精子密度,单位为 108 个每毫升(108 个/mL) ;
s — 每剂量中直线前进运动精子数,单位为 108 个;
v2 — 剂量,单位为毫升(mL)。
5 .3 .5 精液稀释后应静置 5 min,按 5 .2 .3 .2 检测精子活力,活力不得低于 70% 。
GB/T 25172—2020
5 . 4 精液分装
5 . 4 . 1 剂量、每剂量中直线前进运动精子数应符合 GB 23238 的规定。
5 . 4 . 2 可采用袋装或瓶装,应使用对精子无毒害作用且灭菌的一次性塑料或硅胶制品。
5 . 4 . 3 分装完毕,应排出空气后密封。
5 . 5 记录
应及时将精液检验、精液稀释、精液分装的处理和结果填入精液质量检测登记表,登记表见附录 C。
5 . 6 精液保存和运输
5.6. 1 精液应置于 22 ℃ ~25 ℃下 1 h~2 h后,平放入 16 ℃ ~18 ℃恒温箱内避光保存;也可用12 层~ 15 层纱布(或干毛巾)包严直接放入恒温箱内。
5.6.2 保存的精液每隔 4 h~8 h摇动一次并记录,摇动时应轻缓均匀。
5 . 6 . 3 每批精液应留样备查。 同批号的精液在有效期内应抽样检查并记录,常温精液保存登记表见附录 D。
5 . 6 . 4 常温精液产品质量和标志应符合 GB 23238 的规定。
5.6.5 精液应置于 16 ℃ ~18 ℃的恒温箱内避光运输,运输过程中避免强烈震动和碰撞。
GB/T 25172—2020
附 录 A
(资料性附录)
精液处理室配备仪器和用品
精液处理室配备仪器和用品见表 A. 1 。
表 A.1 精液处理室配备仪器和用品
GB/T 25172—2020
表 A.1(续)
GB/T 25172—2020
附 录 B
(资料性附录)
常见常温精液稀释液配方
常见常温精液稀释液配方见表 B. 1 。
表 B.1 常见常温精液稀释液配方
附 录 C
(规范性附录)
精液质量检测登记表
精液质量检测登记表见表 C. 1 。
表 C.1 精液质量检测登记表
附 录 D
(规范性附录)
常温精液保存登记表
常温精液保存登记表见表 D. 1 。
表 D.1 常温精液保存登记表
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